Флуоресцентные исследования природных фотосенсибилизаторов в онкологии и антимикробной терапии

Евтифеев Д.О., Зюбин А.Ю., Демишкевич Е.А., Самусев И.Г. Флуоресцентные исследования природных фотосенсибилизаторов в онкологии и антимикробной терапии // Научно-технический вестник информационных технологий, механики и оптики. 2026. Т. 26, № 2. С. 223–235. doi: 10.17586/2226-1494-2026-26-2-223-235

Введение. Представлен обзор современных работ по применению перспективных природных фотосенсибилизаторов для целей фотодинамической терапии и фотодинамической инактивации микроорганизмов. Рассмотрены актуальные фотосенсибилизаторы с высокой селективностью, высоким квантовым выходом синглетного кислорода и минимальной темной токсичностью. Показано, что природные соединения — куркумин, гиперицин, рибофлавин, берберин, хлорофиллоиды, псоралены и антрациклины являются перспективными кандидатами фотодинамической терапии благодаря биосовместимости и богатому спектру фото и биохимических свойств. Проведен обзор перспективных редких и менее изученных фотосенсибилизаторов. Метод. Выполнен обобщающий анализ современных научных работ, а также анализ экспериментальных данных по стационарной, времяразрешенной флуоресценции и микроскопии (конфокальной и флуоресцентной микроскопией с визуализацией времени жизни (FLIM)) природных фотосенсибилизаторов, в том числе их терапевтической и антимикробной активности in vitro и in vivo по классам, фотофизическим свойствам, особенностям практического применения. Основные результаты. Показано, что гиперицин и периленхиноны достигают квантового выхода синглетного кислорода для измерений в растворах синглетного кислорода примерно 0,5–0,6 при ε более 4·10⁴ л·моль^–1·см^–1, обеспечивая эффективную фотодинамическую терапию опухолей и логарифмическое снижение (6–7 lg КОЕ) бактериальной нагрузки при умеренных дозах излучения (менее 20 Дж·см^–2). Куркумин и рибофлавин совмещают терапевтический эффект с яркой флуоресценцией, позволяя вести оптический мониторинг «в реальном времени». Псоралены реализуют альтернативный механизм фотосшивки ДНК под воздействием длинноволнового ультрафиолетового излучения, что лежит в основе терапии, на основе применения псораленов и длинноволнового ультрафиолетового излучения, а также обеззараживания крови. Комплексирование с ионами лантаноидов или апконверсионными наночастицами расширяет спектр возбуждения до ближнего инфракрасного диапазона и усиливает диагностический сигнал. Отдельно рассмотрены малоизученные природные фотосенсибилизаторы, обладающие перспективными свойствами для фотодинамической терапии. Обсуждение. По результатам обзора показано, что природные фотосенсибилизаторы могут быть универсальной основой для одновременного лечения и оптического мониторинга онкологических и инфекционных процессов, а их встраивание в наноструктуры — включая системы на редкоземельных ионах — позволяет увеличить глубину проникновения излучения и добиться точной визуализации в глубоколежащих тканях, открывая дорогу к клиническому внедрению гибридных фототерапевтических технологий нового поколения. Продемонстрированы перспективы и направления применения уже существующих природных фотосенсибилизаторов в зависимости от их класса и фотофизических свойств.

1. Hönigsmann H. History of phototherapy in dermatology // Photochemical & Photobiological Sciences. 2013. V. 12. N 1. P. 16–21. https://doi.org/10.1039/c2pp25120e

2. Grzybowski A., Sak J., Pawlikowski J. A brief report on the history of phototherapy // Clinics in Dermatology. 2016. V. 34. N 5. P. 532–537. https://doi.org/10.1016/j.clindermatol.2016.05.002

3. Raab O. Über die Wirkung fluoreszierender Stoffe auf Infusorien // Zeitschrift für Biologie. 1900. Bd. 39. S. 524–526.

4. Dougherty T.J., Kaufman J.E., Goldfarb A., Weishaupt K.R., Boyle D., Mittleman A. Photoradiation therapy for the treatment of malignant tumors // Cancer Research. 1978. V. 38. N 8. P. 2628–2635.

5. Agostinis P., Berg K., Cengel K.A., Foster T.H., Girotti A.W., Gollnick S.O., et al. Photodynamic therapy of cancer: an update // CA: A Cancer Journal for Clinicians. 2011. V. 61. N 4. P. 250–281. https://doi.org/10.3322/caac.20114

6. Correia J.H., Rodrigues J.A., Pimenta S., Dong T.,Yang Z.C. Photodynamic therapy review: principles, photosensitizers, applications, and future directions // Pharmaceutics. 2021. V. 13. N 9. P. 1332. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics13091332

7. Redmond R.W., Gamlin J.N. A compilation of singlet oxygen yields from biologically relevant molecules // Photochemistry and Photobiology. 1999. V. 70. N 4. P. 391–475.

8. Hamblin M.R. Antimicrobial photodynamic inactivation: a bright new technique to kill resistant microbes // Current Opinion in Microbiology 2016. V. 33. P. 67–73. https://doi.org/10.1016/j.mib.2016.06.008

9. Surur A.K., de Oliveira A.B., de Annunzio S.R., Ferrisse T.M., Fontana C.R.Bacterial resistance to antimicrobial photodynamic therapy: a critical update // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 2024. V. 255. P. 112905. https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2024.112905

10. Haukvik T., Bruzell E., Kristensen S., Tønnesen H.H. Photokilling of bacteria by curcumin in different aqueous preparations. Studies on curcumin and curcuminoids XXXVII // Pharmazie. 2009. V. 64. N 10. P. 666–673.

11. Ethirajan M., Chen Y., Joshi P., Pandey R.K. The role of porphyrin chemistry in tumor imaging and photodynamic therapy // Chemical Society Reviews. 2011. V. 40. N 1. P. 340–362. https://doi.org/10.1039/B915149B

12. Aebisher D., Przygórzewska A., Bartusik-Aebisher D. Natural photosensitizers in clinical trials // Applied Sciences. 2024. V. 14. N 18. P. 8436. https://doi.org/10.3390/app14188436

13. Lakowicz J.R. Principles of Fluorescence Spectroscopy. Springer, 2006. 980 p.

14. Demchenko A.P. Introduction to Fluorescence Sensing. Springer, 2020. 680 p.

15. Bhadra K., Kumar G.S. Interaction of berberine, palmatine, coralyne, and sanguinarine to quadruplex DNA: a comparative spectroscopic and calorimetric study // Biochimica et Biophysica Acta – General Subjects. 2011. V. 1810. N 4. P. 485–496. https://doi.org/10.1016/j.bbagen.2011.01.011

16. Roberts J.E., He Y., Chignell C., Bilski P., Miller D.S., Andley U., et al. Toxicity and phototoxicity of hypericin to human lens epithelial cells // Investigative Ophthalmology & Visual Science. 2003. V. 44. N 13. P. 304–304.

17. Bandyopadhyay S., Forzano J.A., Dirak M., Chan J.Activatable porphyrin-based sensors, photosensitizers and combination therapeutics // JACS Au. 2025. V. 5. N 1. P. 42–54. https://doi.org/10.1021/jacsau.4c01108

18. Wang T., Song B., Kong D., Zhang W., Yuan J. A lanthanide complexes-based endoplasmic reticulum-targetable probe for ratiometric time-gated luminescence detection and imaging of reactive sulfur species in vitro and in vivo // Journal of Rare Earths. 2025. in press, corrected proof. https://doi.org/10.1016/j.jre.2025.05.005

19. Daub M.E., Ehrenshaft M. The photoactivated toxin cercosporin as a tool in fungal photobiology // Physiologia Plantarum. 1993. V. 89. N 1. P. 227–236. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1993.tb01810.x

20. Eliseeva S.V., Bünzli J.-C.G. Lanthanide luminescence for functional materials and bio-sciences // Chemical Society Reviews. 2010. V. 39. N 1. P. 189–227. https://doi.org/10.1039/B905604C

21. Shirmanova M.V., LukinaM.M., SirotkinaM.A., ShimolinaL.E., DudenkovaV.V., IgnatovaN.I., et al. Effects of photodynamic therapy on tumor metabolism and oxygenation revealed by fluorescence and phosphorescence lifetime imaging // International Journal of Molecular Sciences. 2024. V. 25. N 3. P. 1703. https://doi.org/10.3390/ijms25031703

22. Куличенко А.М., Фаррахова Д.С., Романишкин И.Д., Маклыгина Ю.С. Исследование эффективности фотодинамической терапии по времени жизни флуоресценции хлорина е6 // Тезисы докладов Школы-конференции молодых ученых «Прохоровские недели». М.: ИОФ РАН, 2021. С. 111–112. https://doi.org/10.24412/cl-35673-2021-1-111-112

23. Belashov A.V., ZhikhorevaA.A., GorbunovaI.A., SasinM.E., ShayakhmedovS.S., SemenovaI.V. Photophysical properties of Radachlorin photosensitizer in solutions of different pH, viscosity and polarity // Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy. 2024. V. 305. P. 123480. https://doi.org/10.1016/j.saa.2023.123480

24. Makarov V.I., Skobeltsin A.S., Averchuk A.S., Berdnikov A.K., Chinenkova M.V., Salmina A.B., et al. Effect of photodynamic therapy with the photosensitizer methylene blue on cerebral endotheliocytes in vitro // Photonics. 2024. V. 11. N 4. P. 316. https://doi.org/10.3390/photonics11040316

25. Huntosova V., Gerelli E.,Zellweger M., Wagnières G. Effect of PpIX photoproducts formation on pO₂ measurement by time-resolved delayed fluorescence spectroscopy of PpIX in solution and in vivo // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 2016. V. 164. P. 49–56. https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2016.09.022

26. Yeh S.C.A., Patterson M.S., Hayward J.E., Fang Q.Y. Time-resolved fluorescence in photodynamic therapy // Photonics. 2014. V. 1. N 4. P. 530–564. https://doi.org/10.3390/photonics1040530

27. Zhang Y., Li K., Han X., Chen Q., Shao L., Bai D.A photochemical-responsive nanoparticle boosts doxorubicin uptake to suppress breast cancer cell proliferation by apoptosis // Scientific Reports. 2022. V. 12. N 1. P. 10354. https://doi.org/10.1038/s41598-022-14518-x

28. Spadin F.S., Gergely L.P., Kämpfer T., Frenz M., Vermathen M.Fluorescence lifetime imaging and phasor analysis of intracellular porphyrinic photosensitizers applied with different polymeric formulations // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 2024. V. 254. P. 112904. https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2024.112904

29. Erkkilä M.T., Reichert D., Gesperger J., Kiesel B., Roetzer T., Mercea P.A., et al. Macroscopic fluorescence-lifetime imaging of NADH and protoporphyrin IX improves the detection and grading of 5-aminolevulinic acid-stained brain tumors // Scientific Reports. 2020. V. 10. N 1. P. 20492. https://doi.org/10.1038/s41598-020-77268-8

30. Chen N.T., Wu C.-Y., Chung C.-Y., Hwu Y., Cheng S.-H., Mou C.-Y., et al. Probing the dynamics of doxorubicin-DNA intercalation during the initial activation of apoptosis by fluorescence lifetime imaging microscopy (FLIM) // PloS One. 2012. V. 7. N 9. P. e44947. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044947

31. Thong P.S.P., Olivo M., Chin W.W.L., Bhuvaneswari R., Mancer K., Soo K.C. Clinical application of fluorescence endoscopic imaging using hypericin for the diagnosis of human oral cavity lesions // British Journal of Cancer. 2009. V. 101. N 9. P. 1580–1584. https://doi.org/10.1038/sj.bjc.6605357

32. Massey V. The chemical and biological versatility of riboflavin // Biochemical Society Transactions. 2000. V. 28. N 4. P. 283–296. https://doi.org/10.1042/bst0280283

33. Rong J., Jiang H., Li H., Wu X., Gao H., Zhang Q.,et al. Oxygen-independent polycarbonate iridium (III) photosensitizer for photoactivated chemotherapy via photoredox catalysis boosted by NADH // Nano Research. 2025. V. 18.N 5.P. 94907355. https://doi.org/10.26599/nr.2025.94907355

34.  Santezi C., Reina B.D., Dovigo L.N. Curcumin-mediated Photodynamic Therapy for the treatment of oral infections—a review // Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 2018. V. 21. P. 409–415. https://doi.org/10.1016/j.pdpdt.2018.01.016

35. Debnath R., Jamatia K., Choudhury P.C., Sen S., Saha S., et al. Niosome: a prominent carrier in advanced drug delivery system // Pharmaceutical and Biosciences Journal. 2023. V. 11. N 4. P. 1–19.

36. Kubin A., Meissner P., Wierrani F., Burner U., Bodenteich A., Pytel A., et al.Fluorescence diagnosis of bladder cancer with new water soluble hypericin bound to polyvinylpyrrolidone: PVP‐hypericin // Photochemistry and Photobiology. 2008. V. 84. N 6. P. 1560–1563. https://doi.org/10.1111/j.1751-1097.2008.00384.x

37. Dai T., Huang Y.Y., Hamblin M.R. Photodynamic therapy for localized infections—State of the art // Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 2009. V. 6. N 3–4. P. 170–188. https://doi.org/10.1016/j.pdpdt.2009.10.008

38. Insińska‐Rak M., Sikorski M. Riboflavin interactions with oxygen—a survey from the photochemical perspective // Chemistry–A European Journal. 2014. V. 20. N 47. P. 15280–15291. https://doi.org/10.1002/chem.201403895

39. Szlasa W., Szewczyk A., Drąg-Zalesińska M., Czapor-Irzabek H., Michel O., Kiełbik A., et. al. Mechanisms of curcumin-based photodynamic therapy and its effects in combination with electroporation: An in vitro and molecular dynamics study // Bioelectrochemistry. 2021. V. 140. P. 107806. https://doi.org/10.1016/j.bioelechem.2021.107806

40. Oliveira P.M., Lopes T.Z., Tedesco A.C., Rahal P., Calmon M.F.Effect of berberine associated with photodynamic therapy in cell lines // Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 2020. V. 32. P. 102045. https://doi.org/10.1016/j.pdpdt.2020.102045

41. Li H., Ni Y., Zhao J., Li Y., Xu B. Photodynamic inactivation of edible photosensitizers for fresh food preservation: Comprehensive mechanism of action and enhancement strategies // Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety. 2024. V. 23. N 5. P. e70006. https://doi.org/10.1111/1541-4337.70006

42. Pearl W.G., Selvam R., Karmenyan A.V., Perevedentseva E.V., Hung S.-C., Chang H.-H., et al. Berberine mediated fluorescent gold nanoclusters in biomimetic erythrocyte ghosts as a nanocarrier for enhanced photodynamic treatment // RSC Advances. 2024. V. 14. N5. P. 3321–3334. https://doi.org/10.1039/d3ra08299g

43. Hamminger C., Glueck M., Fefer M., Ckurshumova W., Liu J., Tenhaken R., et al. Photodynamic Inactivation of plant pathogens part II: fungi //Photochemical & Photobiological Sciences. 2022. V. 21. N 2. P. 195–207. https://doi.org/10.1007/s43630-021-00157-0

44. Caires C.S.A., Leal C.R.B., Ramos C.A.N., Bogo D., Lima A.R., Arruda E.J., et al. Photoinactivation effect of eosin methylene blue and chlorophyllin sodium-copper against Staphylococcus aureus and Escherichia coli // Lasers in Medical Science. 2017. V. 32. N 5. P. 1081–1088. https://doi.org/10.1007/s10103-017-2210-1

45. Numsen Jr. H. Mitochondrial reactive oxygen species affect sensitivity to curcumin-induced apoptosis // Free Radical Biology and Medicine. 2008. V. 44. N 7. P. 1382–1393. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2007.12.034

46. Crugeira P.J.L., Almeida H.H.S., Teixeira L.G., Barreiro M.F. Photodynamic inactivation of Staphylococcus aureus by ecological antibacterial solutions associating LED (ʎ 450±10 nm) with curcumin and olive leaf extracts // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 2023. V. 238. P. 112626. https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2022.112626

47. Law S.K., Leung A.W.N., Xu C. Photodynamic action of Curcumin and methylene blue against Bacteria and SARS-CoV-2—A review // Pharmaceuticals. 2023. V. 17. N 1. P. 34. https://doi.org/10.3390/ph17010034

48. Miskovsky P. Hypericin—a new antiviral and antitumor photosensitizer: mechanism of action and interaction with biological macromolecules // Current Drug Targets. 2002. V. 3. N 1. P. 55–84. https://doi.org/10.2174/1389450023348091

49. Chen B., Xu Y., Roskams T., Delaey E., Agostinis P., Vandenheede J.R., et al.Efficacy of antitumoral photodynamic therapy with hypericin: relationship between biodistribution and photodynamic effects in the RIF‐1 mouse tumor model // International Journal of Cancer. 2001. V. 93. N 2. P. 275–282. https://doi.org/10.1002/ijc.1324

50. Garg A.D., Nowis D., Golab J., Agostinis P. Photodynamic therapy: illuminating the road from cell death towards anti-tumour immunity // Apoptosis. 2010. V. 15.N 9. P. 1050–1071. https://doi.org/10.1007/s10495-010-0479-7

51. Daub M.E., Herrero S., Chung K.-R. Photoactivated perylenequinone toxins in fungal pathogenesis of plants // FEMS Microbiology Letters. 2005. V. 252. N 2. P. 197–206. https://doi.org/10.1016/j.femsle.2005.08.033

52. Yang Y., Wang C., Zhuge Y., Zhang J., Xu K., Zhang Q., et al.Photodynamic antifungal activity of hypocrellin a against Candida albicans // Frontiers in Microbiology. 2019. V. 10. P. 1810. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.01810

53. Hussein M., Crawford S., Baker M., Floyd H., Allobawi R., Blaskovich M.A., et al. Hyperforin potentiates polymyxin B against multidrug-resistant Gram-negative pathogens via membrane disruption, biofilm eradication, and oxidative stress // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2025. V. 69. N 12. P. e01007-25. https://doi.org/10.1128/aac.01007-25

54. Kirin N., Egorov A., Kostyukov A., Burtsev I., Markova A., Shibaeva A., et al. Photophysical and photobiological properties of natural chlorins with additional heterocyclic fragments // Journal of Porphyrins and Phthalocyanines. 2026. V. 30. N 1. P. 58-69. https://doi.org/10.1142/S1088424625501172

55. Kim M.-J., Jeong M.D., Zheng Q., Yuk H.-G. Antimicrobial activity of 405 nm light-emitting diode (LED) in the presence of riboflavin against Listeria monocytogenes on the surface of smoked salmon // Food Science and Biotechnology. 2021. V. 30. N 4. P. 609–618. https://doi.org/10.1007/s10068-021-00895-y

56. Ai X., Yu P., Peng L., Luo L., Liu J., Li S., et al. Berberine: a review of its pharmacokinetics properties and therapeutic potentials in diverse vascular diseases // Frontiers in Pharmacology. 2021. V. 12. P. 762654. https://doi.org/10.3389/fphar.2021.762654

57. Bessi I., Bazzicalupi C., Richter C., Jonker H.R.A., Saxena K., Sissi C., et al.Spectroscopic, molecular modeling, and NMR-spectroscopic investigation of the binding mode of the natural alkaloids berberine and sanguinarine to human telomeric G-quadruplex DNA // ACS Chemical Biology. 2012. V. 7. N 6. P. 1109–1119. https://doi.org/10.1021/cb300096g

58. Wang X., Gong Q., Song C., Fang J., Yang Y., Liang X., et al. Berberine-photodynamic therapy sensitizes melanoma cells to cisplatin-induced apoptosis through ROS-mediated P38 MAPK pathways // Toxicology and Applied Pharmacology. 2021. V. 418. P. 115484. https://doi.org/10.1016/j.taap.2021.115484

59. Ning Y., Zhu M., Zhang J.-L. Near-infrared (NIR) lanthanide molecular probes for bioimaging and biosensing // Coordination Chemistry Reviews. 2019. V. 399. P. 213028. https://doi.org/10.1016/j.ccr.2019.213028

60. Zhang T., Dong X., Xu F., Liu W., Han S., Yu L., et al. Advances and challenges in X-ray-excited scintillators and their biomedical applications: current insights and future directions // ACS Applied Materials & Interfaces. 2025. V. 17. N 15. P. 22138–22160. https://doi.org/10.1021/acsami.4c21157

61. Ramamoorthy P.K., Bono A. Antioxidant activity, total phenolic and flavonoid content of Morinda citrifolia fruit extracts from various extraction processes // Journal of Engineering Science and Technology. 2007. V. 2. N 1. P. 70–80.

62. Zin Z.M., Abdul-Hamid A., Osman A. Antioxidative activity of extracts from Mengkudu (Morinda citrifolia L.) root, fruit and leaf // Food Chemistry. 2002. V. 78. N 2. P. 227–231. https://doi.org/10.1016/s0308-8146(01)00402-2

63. Lv L., Chen H., Ho C.-T., Sang S. Chemical components of the roots of Noni (Morinda citrifolia) and their cytotoxic effects // Fitoterapia. 2011. V. 82. N 4. P. 704–708. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2011.02.008

64. Nualsanit T., Rojanapanthu P., Gritsanapan W., Lee S.-H., Lawson D., Baek S.J. Damnacanthal, a Noni component, exhibits antitumorigenic activity in human colorectal cancer cells // Journal of Nutritional Biochemistry. 2012. V. 23. N 8. P. 915–923. https://doi.org/10.1016/j.jnutbio.2011.04.017

65. Wang M.Y., Su C. Cancer preventive effect of Morinda citrifolia (Noni) // Annals of the New York Academy of Sciences. 2001. V. 952. N 1. P. 161–168. https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.2001.tb02737.x

66. Lee Y., Heo S.-Y., Shin H., Lim S., Kang H.W. Sodium copper chlorophyllin mediated interstitial PhotoDynamic Therapy (I-PDT) for Locally Advanced Cervical Cancer (LACC) // Proceedings of SPIE. 2023. V. 12353. P. 1235307. https://doi.org/10.1117/12.2646284

67. Tian D.-M., Cheng H.-Y.,Jiang M.-M.,Shen W.-Z.,Tang J.-S.,Yao X.-S. Cardiac Glycosides from the Seeds of Thevetia peruviana // Journal of Natural Products. 2016. V. 79. N 1. P. 38–50. https://doi.org/10.1021/acs.jnatprod.5b00611

68. Zhu J., Zhang X., Miao Y., He S., Tian D., Yao X., et al. Delivery of acetylthevetin B, an antitumor cardiac glycoside, using polymeric micelles for enhanced therapeutic efficacy against lung cancer cells // Acta Pharmacologica Sinica. 2017. V. 38. N 2. P. 290–300. https://doi.org/10.1038/aps.2016.113

69. Rahman N., Rahman H., Haris M., Mahmood R. Wound healing potentials of Thevetia peruviana: Antioxidants and inflammatory markers criteria // Journal of Traditional and Complementary Medicine. 2017. V. 7. N 4. P. 519–525. https://doi.org/10.1016/j.jtcme.2017.01.005

70. Kumar D., Sanghi A., Chandra R., Arora S., Sharma R.K. Membrane stabilizing, antimicrobial and antioxidant effects of Thevetia peruviana (Per.) K. Schum leaves extracts // Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. 2017. V. 9. N 4. P. 349–353.

71. Qayyum S., Khan A.U. Biofabrication of broad range antibacterial and antibiofilm silver nanoparticles // IET Nanobiotechnology. 2016. V. 10.N 5. P. 349–357. https://doi.org/10.1049/iet-nbt.2015.0091

72. Managit C., Sakurai H., Saiki I. Ethanolic extract of Thevetia peruviana flowers enhances TNF-αand TRAIL-induced apoptosis of human cervical cancer cells via intrinsic and extrinsic pathways // Oncology Letters. 2017. V. 13. N 4. P. 2791–2798. https://doi.org/10.3892/ol.2017.5748

73. Sukhikh S., Ivanova S., Babich O., Shepel E., Kriger O. Study of biological activity of aqueous extracts of Tagetes Patula L. flowers // Fitoterapia. 2025. V. 185. P. 106712. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2025.106712

74. Tsibulnikova A., Zemlyakova E., Slezhkin V., Kostrina A., Samusev I., Bryukhanov V., et al. Activation of singlet oxygen photoluminescence by a heavy Yb ion in a flavonoid solution of Tagetes patula L. // Journal of Molecular Structure. 2025. V. 1346. P. 143216. https://doi.org/10.1016/j.molstruc.2025.143216

75. Ning Y., Tang J., Liu Y.-W., Jing J., Sun Y., Zhang J.-L. Highly luminescent, biocompatible ytterbium (III) complexes as near-infrared fluorophores for living cell imaging // Chemical Science. 2018. V. 9. N 15. P. 3742–3753. https://doi.org/10.1039/c8sc00259b

76. Zibbu G., Batra A. Thevetia peruviana (Pers.) Schum: a plant with enormous therapeutic potential // Journal of Pharmacy Research. 2011. V. 4. N 12. P. 4461–4464.

77. Ramos-Silva A., Tavares-Carreón F.,Figueroa M.,De la Torre-Zavala S.,Gastelum-Arellanez A., Rodríguez-García A.,et al. Anticancer potential of Thevetia peruviana fruit methanolic extract // BMC Complementary and Alternative Medicine. 2017. V. 17. P. 241. https://doi.org/10.1186/s12906-017-1727-y

78. Comelli E., Skinovski J., Sigwalt M.F., Branco A.B., Luz S.R., Baulé C.D. Rupture point analysis of intestinal anastomotic healing in rats under the action of pure Copaíba (Copaifera Iangsdorfii) oil // Acta Cirurgica Brasileira. 2010. V. 25. N 4. P. 362–367. https://doi.org/10.1590/s0102-86502010000400012

79. Ortega-Berlanga B., Betancourt-Mendiola L., del Angel-Olarte C., Hernández-Adame L., Rosales-Mendoza S., Palestino G. An overview of gadolinium-based oxide and oxysulfide particles: Synthesis, properties, and biomedical applications // Crystals. 2021. V. 11. N 9. P. 1094. https://doi.org/10.3390/cryst11091094

80. Xu Y.-Y., Hemmilä I.A., Lövgren, T.N.-E.Co-fluorescence effect in time-resolved fluoroimmunoassays. A review // Analyst. 1992. V. 117. N 7. P. 1061–1069. https://doi.org/10.1039/an9921701061

81. Idris N.M., Gnanasammandhan M.K., Zhang J., Ho P.C., Mahendran R., Zhang Y.In vivo photodynamic therapy using upconversion nanoparticles as remote-controlled nanotransducers // Nature Medicine. 2012. V. 18. N 10. P. 1580–1585. https://doi.org/10.1038/nm.2933

82. Kostiv U., Patsula V., Noculak A., Podhorodecki A., Vetvicka D., Poucková P., et al. Phthalocyanine‐conjugated upconversion NaYF₄: Yb³⁺/Er³⁺@ SiO₂ Nanospheres for NIR‐triggered photodynamic therapy in a tumor mouse model // ChemMedChem. 2017. V. 12. N 24. P. 2066–2073. https://doi.org/10.1002/cmdc.201700508

83. Yang Y., Jiang S., Stanciu S. G., Peng H., Wu A., Yang F. Photodynamic therapy with NIR-II probes: review on state-of-the-art tools and strategies // Materials Horizons. 2024. V. 11. N 23. P. 5815–5842. https://doi.org/10.1039/d4mh00819g

84. Wu X., Zhang Y., Takle K., Bilsel O., Li Z., Lee H., et al. Dye-sensitized core/active shell upconversion nanoparticles for optogenetics and bioimaging applications // ACS Nano. 2016. V. 10. N 1. P. 1060–1066. https://doi.org/10.1021/acsnano.5b06383

85. Gadzhimagomedova Z., Polyakov V., Pankin I., Butova V., Kirsanova D., Soldatov M., et al. BaGdf5 nanophosphors doped with different concentrations of Eu3+ for application in X-ray photodynamic therapy //International Journal of Molecular Sciences. 2021. V. 22. N 23. P. 13040. https://doi.org/10.3390/ijms222313040

This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License